【來源/作者】北納創(chuàng)聯(lián) 

<農(nóng)殘檢測標準物質(zhì)>

　　取出冰箱內(nèi)的酶試劑→開機預熱15分鐘→蔬菜樣品的全部秤取→加提取液→酶試劑的配制→儀器調(diào)“0”→儀器調(diào)“100”→提取樣品→加酶液和顯色劑→做好記錄→檢測對照→檢測樣品→聯(lián)網(wǎng)上傳數(shù)據(jù)

　　注意事項:

　　1、采樣

　　采樣要做好記錄，所采樣品為即將上市或正在上市的蔬菜，樣品要新鮮、潔凈、不帶泥漿。綠葉菜類蔬菜至少從不同5個點上取5株，對于大棵綠葉菜可取不同點上5株蔬菜外葉；茄果瓜類等大果型蔬菜至少從不同3個點上取3個果實。要求每個樣品單獨存放，并做好標記。

　　2、酶試劑保存

　　(1)未開封酶制劑存放在-18℃。

　　(2)每次檢測時先將酶和底物取出，等降到室溫后再進行配置。

　　(3)配置好的酶和底物多在4℃的冰箱內(nèi)存放4天，使用時降到室溫后重做對照。

　　(4)顯色劑:存放于棕色瓶，避光保存，多使用30天。

　　(5)提取液:每次配置時清洗試劑瓶，配置好的試劑在常溫下保存，如在冰箱內(nèi)存放的，要在降到室溫后再提取。

　　3、秤取

　　(1)葉菜類:至少取不同株上的5片葉片疊加，剪成1cm見方秤取1克。如芹菜、香菜、草頭等羽狀或小葉片直接剪葉片。

　　(2)茄果瓜類:取果實的表皮，1cm見方，至少從不同的3個果實上削取1克。

　　(3)特例:番茄要削取青、堅硬部分果皮。紅椒、蔥蒜類、芳香類蔬菜盡量減少傷口，可以采用同比例放大提取方法。

　　4.提取

　　(1)使用移液槍或移液管提取5m1提取液，嚴禁使用針筒、試管等移液。

　　(2)燒杯中的蔬菜要放平，提取液要埋沒蔬菜。

　　(3)提取時間:靜置10分鐘，使用振蕩器3分鐘。

　　(4)使用移液槍提取2.5m1提取液，嚴禁直接倒入帶有刻度的試管，目測。

　　5、酶制劑配置

　　(1)酶制劑配置一定要使用蒸餾水；(2)酶和底物等降到室溫后再配置。

　　6、校正

　　(1)每次檢測，速測儀都要進行調(diào)“0”和調(diào)“100”。

　　(2)聯(lián)機后，每個通道先放入黑塊，調(diào)“0”，之后取出黑塊，放入比色皿，調(diào)“100”。

　　(3)在調(diào)“0”和調(diào)“100”時要等數(shù)值或曲線穩(wěn)定5秒后，再點確認。

　　7、加試劑

　　(1)加試劑時移液槍一定要垂直試管，不能讓試劑留在試管壁上，加好后要搖勻。

　　(2)每組加酶和顯色劑后要記錄好時間，并列表每5分鐘加一組酶和顯色劑。在組反映15分鐘后加底物。

　　8、對照

　　(1)每開一瓶酶試劑要做一次對照；

　　(2)對照時間要和檢測時間同步，各為3分鐘。

　　(3)對照可以在加酶和顯色劑后直接加底物，馬上上機檢測。

　　9、上機檢測

　　要求加一個底物馬上上機點“檢測”，不可以一組全部加好底物，上機，再一個一個點檢測。

　　10、燒杯

　　每次使用完畢后要清洗干凈倒置在干凈紗布上，每周要進行一次浸泡清洗，保持燒杯壁干凈透明，不留水垢。

　　11、試管

　　每次使用完畢后要清洗干凈倒置在試管架上，每周要進行一次浸泡清洗，保持試管壁干凈透明，不留水垢。

　　12、比色皿

　　(1)每次使用后用蒸餾水沖洗3次，方可再次使用。使用完清洗后要倒置，等水漬干后放入比色皿盒中保存。

　　(2)比色皿的光面不能用手觸摸，當光面透明度下降時要更換新的使用。

　　13、洗液瓶

　　每次使用完畢后要清洗，并倒置。